1. 去除色譜柱內(nèi)的緩沖液，鹽，酸的方法：使用不含緩沖液，鹽，酸的流動相沖洗10-15分鐘。
   例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時，就使用甲醇/水 =50/50沖洗

2. 沖洗色譜柱內(nèi)附著物的方法，基線不穩(wěn)時的解決方法

• 樣本不是蛋白質時，使用甲醇或四氫呋喃沖洗。

• 樣品是蛋白質時，使用含0.1% C2HF3O2的50-70%的乙腈/水沖洗

1. 短期（數(shù)日）保存：
   使用不含緩沖液，鹽，酸的流動相沖洗10-15分鐘。保存。
   例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時，就使用甲醇/水 =50/50沖洗

2. 長期（1個月以上）保存：
   使用后，先用不含酸和鹽的流動相清洗色譜柱，再將流動相置換為乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30，保存。

除堿溶液和強酸溶液（pH1.5以下）以外都可以使用。（強堿溶液會使硅膠溶化，強酸溶液會使固定相脫落）
注意點：
溶劑粘度過高會導致壓力上升，請將壓力控制在20Mpa以下。使用酸性流動相或凝固點高的溶劑后，必須清洗色譜柱。

• 一般情況下緩沖液濃度為0.005~0.02 mol/L即可。

• 流動相在使用前一定要通過0.5μm以下的濾膜過濾。

• 蛋白質反相模式分析時，請使用大孔徑色譜柱（孔隙直徑300?) COSMOSIL Protein - R（粒徑5μm）。